Formation
La cytométrie en flux
Organisme juridiquement chargé de l'offre de formation proposée
Centre National de la Recherche Scientifique
CNRS
- Cadre demandeur d'emploi
- Demandeur d'emploi
- Agent de la fonction publique
- Agent contractuel de la fonction publique
- Autre public
Acquérir par une alternance de cours et de travaux pratiques, les principes et la méthodologie d'analyse d'échantillons par cytométrie en flux
Concevoir une expérience de cytométrie en flux
Optimiser ses échantillons contrôles et les réglages du cytomètre
Traiter les données et les analyser
Concevoir une expérience de cytométrie en flux
Optimiser ses échantillons contrôles et les réglages du cytomètre
Traiter les données et les analyser
Cours
Principes généraux de la cytométrie et fonctionnement (fluidique, optique, détection)
Fluorescence et fluorochromes employés en cytométrie
Méthodes de préparation des échantillons et mise au point expérimentale (choix et combinaison des sondes, échantillons contrôles...)
Réglages (détecteurs et seuils), compensations, interfaces logicielles
Notions de tri cellulaire
Applications : phénotypage de surface et intracellulaire, cycle cellulaire, mort cellulaire, apoptose...
Information sur les nouveaux développements en cytométrie
Hygiène et sécurité autour de la cytométrie
Travaux pratiques
Réglages manuels du cytomètre : détecteurs, seuils, compensations
Stratégie d'analyse : exclusion des doublets, stratégie de fenêtrage et création de la page d'analyse
Immuno-phénotypage par marquages multicouleurs
Analyse du cycle cellulaire
Analyse de l'apoptose (activité caspase, potentiel membranaire mitochondrial, marquage à l'AnnexinV)
Analyse de données avec logiciel libre et/ou constructeur (FACSDiva, Flow Jo...)
Principes généraux de la cytométrie et fonctionnement (fluidique, optique, détection)
Fluorescence et fluorochromes employés en cytométrie
Méthodes de préparation des échantillons et mise au point expérimentale (choix et combinaison des sondes, échantillons contrôles...)
Réglages (détecteurs et seuils), compensations, interfaces logicielles
Notions de tri cellulaire
Applications : phénotypage de surface et intracellulaire, cycle cellulaire, mort cellulaire, apoptose...
Information sur les nouveaux développements en cytométrie
Hygiène et sécurité autour de la cytométrie
Travaux pratiques
Réglages manuels du cytomètre : détecteurs, seuils, compensations
Stratégie d'analyse : exclusion des doublets, stratégie de fenêtrage et création de la page d'analyse
Immuno-phénotypage par marquages multicouleurs
Analyse du cycle cellulaire
Analyse de l'apoptose (activité caspase, potentiel membranaire mitochondrial, marquage à l'AnnexinV)
Analyse de données avec logiciel libre et/ou constructeur (FACSDiva, Flow Jo...)
Des connaissances en biologie sont nécessaires.
Durée en centre : 21 heures
Durée totale : 21 heures
4 jours et 21 heures
Durée totale : 21 heures
4 jours et 21 heures
Formacode (Domaines de formation) :
- 12026 Microbiologie
- K2402 Recherche en sciences de l'univers, de la matière et du vivant
- 118 Sciences de la vie
Modalités pédagogiques
Alternance de cours (10 h) et de TD/TP (11 h) Pour les TP/TD, les participants seront en sous-groupe de 2 à 4 personnes maximum
Les actions du Plan Régional de Formation sont financées avec le concours du Fonds Européen
Entrées/sorties à dates fixes
Formation entièrement présentielle
LIEU DE FORMATION
IPMC
660 route des Lucioles
06560 VALBONNE
660 route des Lucioles
06560 VALBONNE
04 93 95 77 62
Organisme formateur :
Centre National de la Recherche Scientifique
Centre National de la Recherche Scientifique
CNRS